Американское общество гирудотерапии

Эффективный и надёжный лабораторный рабочий процесс и база данных по тетраподам для крупномасштабных исследований экологической ДНК

An efficient and robust laboratory workflow and tetrapod database for larger scale environmental DNA studies

Методологическое исследование в журнале GigaScience (2019)

Последнее обновление: 18 июня 2026 г.Рецензент: ASH Editorial Board
Научная статья — обзор доказательствСсылка на статью
Уровень доказательности: Фундаментальное исследование (неклиническое)Геномика и протеомикаAxtner J et al. · GigaScience, 2019

Аннотация

BACKGROUND: The use of environmental DNA for species detection via metabarcoding is growing rapidly. We present a co-designed lab workflow and bioinformatic pipeline to mitigate the 2 most important risks of environmental DNA use: sample contamination and taxonomic misassignment. These risks arise from the need for polymerase chain reaction (PCR) amplification to detect the trace amounts of DNA combined with the necessity of using short target regions due to DNA degradation. FINDINGS: Our high-throughput workflow minimizes these risks via a 4-step strategy: (i) technical replication with 2 PCR replicates and 2 extraction replicates; (ii) using multi-markers (12S,16S,CytB); (iii) a "twin-tagging," 2-step PCR protocol; and (iv) use of the probabilistic taxonomic assignment method PROTAX, which can account for incomplete reference databases. Because annotation errors in the reference sequences can result in taxonomic misassignment, we supply a protocol for curating sequence datasets. For some taxonomic groups and some markers, curation resulted in >50% of sequences being deleted from public reference databases, owing to (i) limited overlap between our target amplicon and reference sequences, (ii) mislabelling of reference sequences, and (iii) redundancy. Finally, we provide a bioinformatic pipeline to process amplicons and conduct PROTAX assignment and tested it on an invertebrate-derived DNA dataset from 1,532 leeches from Sabah, Malaysia. Twin-tagging allowed us to detect and exclude sequences with non-matching tags. The smallest DNA fragment (16S) amplified most frequently for all samples but was less powerful for discriminating at species rank. Using a stringent and lax acceptance criterion we found 162 (stringent) and 190 (lax) vertebrate detections of 95 (stringent) and 109 (lax) leech samples. CONCLUSIONS: Our metabarcoding workflow should help research groups increase the robustness of their results and therefore facilitate wider use of environmental and invertebrate-derived DNA, which is turning into a valuable source of ecological and conservation information on tetrapods.

Аннотация взята из PubMed (NCBI) для цитируемой записи и приводится на языке оригинала. Авторитетной является версия в исходной публикации.

Аннотация оставлена без перевода, чтобы сохранить собственные формулировки авторов.

Тип публикацииJournal ArticleResearch Support, Non-U.S. Gov't
Индексированные термины MeSHComputational BiologyDNA Barcoding, TaxonomicDatabases, Nucleic AcidLaboratoriesMetagenomeMetagenomicsQuality ControlWorkflow

Резюме

Предложены лабораторный протокол и биоинформатический конвейер, снижающие два главных риска метабаркодирования экологической ДНК — контаминацию образцов и ошибочную таксономическую идентификацию: технические реплики (2 ПЦР и 2 экстракции), мультимаркеры (12S, 16S, CytB), «двойная маркировка» и вероятностное назначение таксонов PROTAX. Протокол опробован на ДНК из 1532 пиявок (Сабах, Малайзия): получено 162 (строгий критерий) и 190 (нестрогий) детекций позвоночных у 95 и 109 образцов; 16S амплифицировался чаще, но хуже различал виды. Для отдельных таксонов и маркеров кураторство референсных последовательностей исключало >50% записей.

Контекст

В данном исследовании представлен лабораторный протокол и биоинформатический пайплайн для метабаркодинга экологической ДНК, разработанный для минимизации контаминации образцов и ошибок таксономического отнесения за счёт технической репликации, мультимаркерного подхода (12S, 16S, CytB), ПЦР с двойным мечением (twin-tagging PCR) и вероятностного таксономического отнесения с помощью программы PROTAX. Пайплайн был протестирован на ДНК, полученной из беспозвоночных, — 1532 пиявок из Сабаха (Малайзия), — что позволило выявить 162 детекции позвоночных при строгих критериях (из 95 образцов пиявок) и 190 — при менее строгих критериях (из 109 образцов пиявок). В данном исследовании пиявки выступают в роли пассивных коллекторов ДНК позвоночных для целей экологического и природоохранного мониторинга, а не как объекты терапевтических исследований или исследований секретома.

Цитирование

Библиографическая ссылка (стиль Vancouver)

Axtner J, Crampton-Platt A, Hörig LA, Mohamed A, Xu CCY, Yu DW, et al. An efficient and robust laboratory workflow and tetrapod database for larger scale environmental DNA studies. Gigascience. 2019;8(4). doi:10.1093/gigascience/giz029. PMID: 30997489

Библиографические данные (авторы, том, страницы, DOI) взяты из записи PubMed.

Связанный клинический контекст

Узнайте, как это исследование связано с клинической практикой

Похожие исследования

Другие рецензируемые исследования в разделе «Геномика и протеомика».

Все исследования, проанализированные ASH →

Добавлено в библиотеку ASH: 27 мая 2026 г. · Последнее обновление сайта: 18 июня 2026 г.

Этот сайт предоставляет образовательную информацию и не является медицинской консультацией, диагнозом или рекомендацией по лечению. Гирудотерапия сопряжена с клинически значимыми рисками и должна проводиться только квалифицированными клиницистами в рамках институционально утверждённых протоколов. Разрешение FDA 510(k) для медицинских пиявок ограничено определёнными показаниями; обсуждения исследовательского и нелицензионного применения отмечены соответствующим образом. Для индивидуальных медицинских рекомендаций обратитесь к квалифицированному медицинскому специалисту.